Artykuł naukowy
Metody oznaczania polifenoli
(katechin oraz teaflawin)
występujących w herbatach
dr n. farm. WOJCIECH A
UCZAJ
Akademia Medyczna w Białymstoku
Zakład Chemii Nieorganicznej i Analitycznej
Zarówno katechiny jak i teaflawiny posiadają silne działanie
Streszczenie:
W artykule zamieszczono informacje do-
antyoksydacyjne, ale wykazują również wiele innych
tyczÄ…ce struktury polifenoli oraz metod ich
korzystnych działań biologicznych takich jak: zmniejszenie
analizy w ekstraktach herbat oraz mate-
riale biologicznym, ze zwróceniem szcze- prawdopodobieństwa wystąpienia mutacji, hamowanie rozwoju
gólnej uwagi na technikę wysokosprawnej
nowotworów oraz powstawania przerzutów [5,6]. Jednakże, aby
chromatografii cieczowej (HPLC) z różny-
ocenić możliwość biologicznego działania katechin i teaflawin,
mi typami detekcji, jako najlepszej metody
ilościowego oznaczania tych związków.
należy znać ich zawartość w roztworach herbat, a także
SÅ‚owa kluczowe:
biodostępność w organizmie człowieka.
herbata, katechiny, teaflawiny, HPLC
Niestety, niektóre z tych metod pozwa-
Summary:
lają oznaczyć jedynie pojedyncze poli-
This paper contains information about
structure of polyphenols, and methods of fenole herbat, podczas gdy inne umoż-
their determination in teas and biological
liwiają pomiar zawartości wszystkich
matrices with special attention to high per-
polifenoli. W niniejszym artykule zostały
formance liquid chromatography (HPLC)
opisane metody zapewniajÄ…ce efektyw-
with different types of detection as the best
ny rozdział, identyfikację, jak również iloś-
method for analysis of these compounds.
ciowe oznaczanie tych związków w roz-
katechina (+)C: R1 = R2 = OH; R3 = H
Key words:
epikatechina (-)EC: R1 = R2 = OH; R3 = H tworach wodnych, a także w tkankach
galusan katechiny (-)GC: R1 = R2 = R3 = OH
Key words: tea, catechins, theaflavins, HPLC
zwierząt i człowieka.
epigalokatechina (-)EGC: R1 = R2 = R3 = OH
galokatechina (-)CG: R1 = gr. galusanowa; R2 = H; R3 = OH
galusan epikatechiny (-)ECG: R1 = gr. galusanowa;
Metody oznaczania katechin
R2 = OH; R3 = H
i teaflawin w roztworach
olifenole, w tym katechiny i tea- galusan galokatechiny (-)GCG: R1 = gr. galusanowa;
R2 = R3 = OH
wodnych
flawiny, występują w dużych iloś-
galusan epigalokatechiny (-)EGCG: R1 = gr. galusanowa;
Pciach w jadalnych produktach R2 = R3 = OH MetodÄ… z wyboru do oznaczania ka-
roślinnych oraz roślinach leczniczych. techin w roztworze herbaty jest wyso-
Ryc. 1. Struktura ośmiu podstawowych katechin
Katechiny sÄ… obecne m.in. w winogro- kosprawna chromatografia cieczowa
zielonej herbaty.
nach, owocach cytrusowych, ziarnach (HPLC) w układzie odwróconych faz
kawy oraz liściach herbaty. Ich zawar- techin, zwane teaflawinami, posiadają- z detekcją spektrofotometryczną. Za-
tość w świeżym liściu herbaty wynosi ce charakterystyczny siedmioczłonowy
20-30 proc. i podobna jest do zawarto- pierścień benzotropolonowy [4]. Znane
ści w roztworze zielonej herbaty otrzy- są cztery teaflawiny: teaflawina (TF1), 3-
mywanej w wyniku suszenia świeżych galusan teaflawiny (TF2A), 3 -galusan tea-
liści lub działania na nie pary wodnej flawiny (TF2B) i 3,3 -digalusan teaflawiny
w podwyższonej temperaturze [1]. Na (TF3), a ich ogólną strukturę przedsta-
ryc. 1 została przedstawiona struktura wiono na ryc. 2.
podstawowych katechin występują- W literaturze opisano wiele metod
cych w liściach herbaty. oznaczania katechin oraz pojedyncze
W czasie technologicznego proce- metody służące do oznaczania teafla-
su otrzymywania czarnej herbaty oko- win [7,8]. Metody te wykorzystujÄ… takie
ło 75 proc. katechin zawartych w liściach techniki jak wysokosprawna chromato-
teaflawina [TF1]: R1=R2=OH
herbaty ulega enzymatycznej przemia- grafia cieczowa (HPLC), chromatografia
3-galusan teaflawiny [TF2A]: R1 =Galloyl; R2 = OH
3 -galusan teaflawiny [TF2B]: R1 = OH; R2 = reszta galusanowa
nie, polegajÄ…cej na ich utlenianiu oraz gazowa (GC), chromatografia cienkowar-
3,3 -digalusan teaflawiny [TF3]: R1 = R2 = reszta galusanowa
częściowej polimeryzacji [2,3]. W wyni- stwowa (TLC), chromatografia bibułowa,
ku tych przemian powstają dimery ka- czy też elektroforeza kapilarna [9,10,11,12]. Ryc 2. Struktura teaflawin.
GAZETA FARMACEUTYCZNA 5/2008
30
Przeczytaj l rozwiąż test l sprawdz
, czy dobrze!
ny chromatograficz- masowÄ… (GC-MS) [42]. Jak do tej pory,
nej, natomiast ja- pomimo stosowania różnych warun-
kość uzyskiwanych ków rozdziału i różnych typów detekcji
chromatogramów (GC-FID, GC-MS), nie udało się jednak
zależ y od obec- opracować metody opartej o chroma-
ności kwasu w fa- tografię gazową pozwalającej na cał-
zie ruchomej. Efekt kowite rozdzielenie i jednoczesne iloÅ›-
tych czynników dla ciowe oznaczenie ośmiu naturalnie
mieszaniny sześ- występujących katechin.
ciu katechin został
Ryc. 3. Chromatogram ośmiu katechin zawartych w roztworze zielonej herbaty
Metody oznaczania katechin
otrzymany metodą HPLC z wykorzystaniem detektora UV i układu: woda-
przedstawiony na
acetonitryl kwas fosforowy jako fazy ruchomej po uprzednim rozdzieleniu
i teaflawin w materiale
ryc. 4 [23].
w odwróconym układzie faz na kolumnie z wypełnieniem C18 [15].
biologicznym
Do oznaczania
stosowanie detektora spektrofotome- katechin w roztworze herbat, oprócz Wysokosprawna chromatografia cie-
trycznego jest możliwe dzięki zdolno- metod wykorzystujących HPLC można czowa wykorzystywana jest także do
ści oznaczanego związku do absorpcji stosować także metody oparte o tech- oznaczania katechin w materiale bio-
promieniowania w zakresie nadfioletu nikÄ™ chromatografii gazowej (GC) po- logicznym [15]. Procedura przygoto-
lub światła widzialnego (UV-VIS). Wy- łączonej z różnego typu detektora- wania próbek do tego typu oznaczeń
nika to z obecności w obrębie struktu- mi. Do oznaczania katechin techniką ze względu na skomplikowaną matry-
ry katechin pierścieni aromatycznych, chromatografii gazowej niezbędne cę jest bardziej złożona niż w przypad-
stanowiących grupy chromoforowe jest jednak wstępne przygotowanie ku oznaczania polifenoli w roztworze
posiadające zdolność pochłaniania próbki, polegające na derywatyzacji wodnym. Obejmuje ona enzymatycz-
promieniowania elektromagnetycz- katechin, które jako związki polarne ną hydrolizę pochodnych katechin,
nego z zakresu nadfioletu. nie sÄ… wystarczajÄ…co lotne, aby wpro- powstajÄ…cych w organizmie, przy
Ponieważ polifenole w roztworze wadzić je bezpośrednio na kolumnę użyciu mieszaniny dwóch enzymów:
herbaty wystÄ™pujÄ… w postaci poÅ‚Ä…czeÅ„ chromatograficznÄ…. Do oznaczeÅ„ wy- ² glukuronidazy i sulfatazy oraz eks-
glikozydowych przygotowywanie ma- korzystuje się zarówno kolumny szkla- trakcję wolnych katechin octanem ety-
teriału do analizy wymaga hydrolizy ne jak też krzemionkowe kolumny ka- lu. Katechiny rozdzielane są następnie
glikozydów do aglikonów za pomocą pilarne. Przy wykorzystaniu kolumny na kolumnie z wypełnieniem C18 w od-
kwasu solnego. Uwolnione polifenole szklanej wypełnionej fazą stacjonarną wróconym układzie faz, przy wyko-
są następnie rozdzielane techniką HPLC 3 proc. OV-1 oraz detek-
w układzie odwróconych faz przy uży- tora płomieniowo-joniza-
ciu kolumny z wypełnieniem C18. Roz- cyjnego (FID) można roz-
działu dokonuje się stosując elucję dzielić mieszaninę pięciu
izokratycznÄ… mieszaninÄ… acetonitryl trimetylosililowych (TMS)
bufor fosforanowy lub elucjÄ™ gradien- pochodnych katechin: C,
tową w układzie faz metanol woda EC, EGC, ECG i EGCG [10].
o pH 2,8. IdentyfikacjÄ™ przeprowadza Zastosowanie gradientu
się wykorzystując najczęściej detek- temperatury umożliwia
tor UV lub detektor z matrycą diodową skrócenie czasu analizy do
(ang. diode array detector  DAD) umoż- niespełna 32 minut. Odby-
liwiający zarejestrowanie całego wid- wa się to jednak kosztem
ma absorpcji analizowanego związku niecałkowitego rozdziele-
i ustalenie długości fali, przy której wy- nia sygnałów pochodzą-
stępuje maksimum absorpcji. Wykorzy- cych od C i i EC (piki 1 i 2
stanie tej techniki umożliwia rozdział na ryc. 5). Natomiast cał-
i ilościowe oznaczenie ośmiu katechin kowity rozdział pięciu ka-
występujących w liściach i roztworze techin zapewnia dopiero
herbaty ryc. 3 [14-16], jak również poja- metoda obejmująca dwa
wiających się w ludzkiej ślinie po spo- 40-minutowe cykle sta-
życiu herbaty [34]. Limit oznaczalności łotemperaturowe. Limit
(najmniejsza ilość substancji jaką moż- oznaczalności dla ozna-
na oznaczyć ilościowo daną metodą) czania katechin metodą
przy zastosowaniu metod wykorzystu- chromatografii gazowej
jących technikę HPLC z detekcją spek- wynosi poniżej 10ng/ml
Ryc. 4. Efekt rodzaju zastosowanej fazy stacjonarnej oraz obecności
trofotometryczną wynosi 0,2 ng/ml. [10]. Do oznaczania kate- kwasu w fazie ruchomej na rozdział mieszaniny standardów katechin.
(A) rozdział uzyskany przy wykorzystaniu nieaktywowanej odwróconej
W przypadku stosowania HPLC z de- chin stosowano także me-
fazy stacjonarnej C18 oraz fazy ruchomej zawierającej kwas; (B) rozdział
tekcją UV do ilościowego oznaczania todę wykorzystującą po- uzyskany przy wykorzystaniu standardowej monomerycznej fazy
stacjonarnej C18 oraz fazy ruchomej zawierającej kwas; (C) rozdział
katechin istotnÄ… rolÄ™ odgrywa rodzaj Å‚Ä…czenie chromatografii
uzyskany przy wykorzystaniu nieaktywowanej odwróconej fazy
wypełnienia (fazy stacjonarnej) kolum- gazowej ze spektrometrią stacjonarnej C18 oraz fazy ruchomej nie zawierającej kwasu [23].
GAZETA FARMACEUTYCZNA 5/2008
31
Artykuł naukowy
odpowiednich jonów kosztownej aparatury. Obecnie do iloś-
fragmentarycznych. SÅ‚a- ciowego oznaczania katechin w mate-
by rozdział chromato- riale biologicznym najczęściej stosuje
graficzny uz yskiwany się metodę wykorzystującą połączenie
w tej metodzie całkowi- HPLC z detektorem elektrochemicz-
cie rekompensuje wy- nym [44]. Do tego celu stosowany jest
soka selektywność ja- detektor kulometryczny lub ampero-
kÄ… zapewnia detekcja metryczny. Wykorzystanie tych de-
spektrometrii masowej. tektorów umożliwia fakt, że katechiny
Ponadto zastosowa- i teaflawiny należą do związków, któ-
nie kapilarnych kolumn re w zależności od warunków mogą
chromatograficznych, ulegać reakcji utlenienia bądz
reduk-
Ryc. 5. Wykorzystanie techniki GC-FID do rozdziału mieszaniny
k tóre charak ter y zuje cji, a wartości ich standardowego po-
trimetylosililowych pochodnych pięciu katechin: (1) EC, (2) C, (3) EGC,
wysoka rozdzielczość, tencjału redoks zawierają się w prze-
(4) ECG, (5) EGCG, (6) kwercetyna. Wypełnienie kolumny - 3% OV-1.
Izotermiczny rozdziaÅ‚ w temperaturze 235°C przez 22 min, póz
niej
w połączeniu z wyso- dziale 430-550 mV. Zasada działania
gradient temperatury - 48°C/min do 310°C [10].
ką czułością i selektyw- detektora kulometrycznego opiera się
rzystaniu jako fazy ruchomej układu nością spektrometrii masowej pozwa- na pomiarze całkowitego ładunku, ja-
dwóch buforów fosforanowych o róż- la na oznaczenie katechin i teaflawin ki przepływa podczas reakcji utlenia-
nej zawartości acetonitrylu i tetrahy- w złożonych matrycach biologicz- nia bądz
redukcji czÄ…steczek analitu
drofuranu [15]. Katechiny w płynach nych na poziomie pmol/ml. Przykła- przy powierzchni elektrody pracują-
ustrojowych takich jak surowica krwi dem jest chromatogram otrzymany cej. Natomiast w przypadku detekto-
lub mocz występują w stężeniach od dla próbki osocza ludzkiego, w którym ra amperometrycznego mierzone jest
50 do 300 ng/ml, czyli o rząd wielkości oznaczano zawartość EGCG wykorzy- natężenie prądu przepływającego po-
mniejszych od zawartości tych związ- stując upakowaną kolumnę kapilar- między elektrodą pracującą a elek-
ków w roztworach herbat [15]. Z tego ną C18 w połączeniu z techniką ciekłej trodą odniesienia. Obie wielkości, za-
powodu oznaczanie katechin metodą chromatografii i spektrometrii maso- równo ładunek jak i natężenie prądu,
HPLC w matrycach biologicznych wy- wej z jonizacją w polu elektrycznym są proporcjonalne do stężenia ozna-
maga zastosowania odpowiednio czu- LC-ESI-MS (ryc. 6) [31]. czanego zwiÄ…zku. Klasyczne naczyn-
łych detektorów. Najbardziej obiecują- Wykazano również, że tandemowa ko pomiarowe obydwu detektorów
cą metodą analizy zarówno katechin, spektrometria masowa wykorzystująca zawiera układ trzech elektrod: elektro-
teaflawin jak i ich metabolitów w ma- jonizację w polu elektrycznym w po- dy pracującej, na której powierzchni
teriale biologicznym jest połączenie łączeniu z chromatografią cieczową ma miejsce reakcja utleniania bądz
re-
chromatografii cieczowej ze spektro- (LC-ESI-MS-MS) oprócz katechin pozwa- dukcji oznaczanego związku, elektro-
metrią masową (LC-MS). Spektrome- la również na identyfikację i ilościowe dy pomocniczej, której zadaniem jest
tria masowa jest techniką opartą na jo- oznaczenie teaflawin, których zawar- kompensowanie jakichkolwiek zmian
nizacji cząsteczek lub atomów, której tość w materiale biologicznym jest rzę- przewodnictwa fazy ruchomej oraz
podstawą jest pomiar stosunku masy du ng/ml (ryc. 7). Limit oznaczalności elektrody odniesienia. Przyłożony po-
do ładunku elektrycznego cząsteczki w metodach wykorzystujących LC-MS tencjał do elektrody pracującej jest
(m/z). Do wyznaczania mas moleku- wynosi 0,1 pg/ml [8]. charakterystyczny dla analizowanego
larnych oraz w celu ustalenia struktury Mimo zalet metod wykorzystujących związku i jest utrzymywany na stałym
katechin, oprócz najczęściej używanej spektrometrię masową nie są one czę- poziomie względem potencjału elek-
jonizacji elektrorozpylania (Electro- sto stosowane, ponieważ wymagają trody odniesienia.
spray Ionization  ESI) [32] stoso- Obecnie do oznaczania polife-
wano również jonizację elektro- noli herbat najczęściej wykorzystu-
nami (Electron Ionization  EI) [33], je siÄ™ technikÄ™ HPLC z detektorem
i bombardowanie szybkimi ato- kulometrycznym, posiadajÄ…cym
mami [33]. Po raz pierwszy do kilka elektrod pracujÄ…cych jedno-
identyfikacji katechin zastosowa- cześnie przy różnych potencjałach,
no metodę wykorzystującą ter- co umożliwia rozdział i jednoczes-
mojonizację próbki (Thermospray ne ilościowe oznaczenie czterech
Ionisation Mass Spectrometry  związków: (-)EGC, (-)EGCG, (-)EC
TSI-MS), co pozwoliło na rozdzie- oraz (-)ECG w surowicy krwi, mo-
lenie oraz identyfikacjÄ™ miesza- czu oraz homogenatach tkanko-
niny czterech katechin (EC, EGC, wych [45].
ECG, EGCG) [43]. Również tande- Natomiast zastosowanie de-
mowy spektrometr mas z frag- tektora amperometrycznego po-
mentacją jonów przez zderzenia zwala na oznaczenie w surowicy
Ryc. 6. Chromatogram otrzymany dla próbki osocza ludzkiego, w której
oznaczano zawartość EGCG wykorzystując kolumnę kapilarną (30
(Collisionally Induced Dissociation krwi oraz homogenetach tkanko-
cm3506 mm3256 mm z wypełnieniem Zorbax eclipse monomeric C18)
 CID) umożliwia identyfikację wych trzech katechin występu-
w połączeniu z techniką ciekłej chromatografii i spektrometrii masowej
z jonizacjÄ… w polu elektrycznym (LC-ESI-MS) [31].
katechin poprzez przypisanie im jących w największych ilościach
GAZETA FARMACEUTYCZNA 5/2008
32
Przeczytaj l rozwiąż test l sprawdz
, czy dobrze!
orescencjÄ™ wykazywanÄ… przez (+)-C
i ( )-EC, co pozwala oznaczyć nawet
śladowe ilości tych związków. Limit
oznaczalności w metodach wykorzy-
stujÄ…cych HPLC z detekcjÄ… fluorescen-
cyjną wynosi 0,8 pg/ml. Pozostałe ka-
techiny, nie wykazujące zdolności do
fluorescencji, analizowane są przy uży-
ciu detektora UV, którego małą czułość
niestety nie wystarcza do ich ozna-
czania na poziomie obserwowanym
Ryc. 7. RozdziaÅ‚ mieszaniny katechin i teaflawin czarnej herbaty o stężeniu w przybliżeniu 70 pmol/µl, w tkankach.
chromatogram uzyskany metodą LC-ESI-MS-MS. Piki w następującej kolejności: (1) (-)-epigalokatechina; (2)
(Bibliografia u autora)
(-)-epikatechina wymywana jednocześnie z (3) (-)-galusanem epigalokatechiny; (4) (-)-galusan epikatechiny;
(5) teaflawina; (6) 3-galusan teaflawiny; (7); 3 -galusan teaflawiny; (8) 3,3 -digalusan teaflawiny [8].
Pytania testowe
w organizmie: EC, EGC i EGCG [46,47]. specyficzna i pozwala na oznacze-
(Uzupełnij poniższe zdania)
Limit oznaczalności jaki można uzy- nie zawartości tylko EGC i EGCG w su-
skać stosując technikę HPLC z detek- rowicy krwi i moczu, ale na poziomie
1. Do oznaczania katechin oraz teafla-
cjÄ… elektrochemicznÄ… wynosi 1 pg/ml pg/ml [48]. Poza tym dodatkowym jej
win najczęściej wykorzystywana jest
(ryc. 8). ograniczeniem jest konieczność stoso- technika:
W literaturze opisano również meto- wania elucji izokratycznej, co utrudnia a. wysokosprawnej chromatografii cieczo-
wej (HPLC)
dy wykorzystujące HPLC z innymi ty- rozdział związków. Do oznaczania ka-
b. chromatografii gazowej (GC)
pami detektorów, ale większość z nich techin w materiale biologicznym wy-
c. chromatografii cienkowarstwowej (TLC)
umożliwia oznaczanie tylko niektórych korzystywano także HPLC z jednoczes-
d. elektroforezy kapilarnej
polifenoli. Przykładowo metoda wy- ną detekcją UV i fluorescencyjną [40].
korzystujÄ…ca HPLC z detekcjÄ… chemilu- W przypadku detektora fluorescencyj-
2. Detektorem z wyboru do oznacza-
minescencyjnÄ… (HPLC-CL) jest bardzo nego wykorzystuje siÄ™ naturalnÄ… flu-
nia polifenoli w roztworach herbat
jest detektor:
a. fluorescencyjny
b. spektrofotometryczny
c. elektrochemiczny
d. spektrometrii masowej
3. Polifenole w roztworach herbat wy-
stępują w postaci:
a. wolnej
b. połączeń glikozydowych
c. związków kompleksowych
d. zestryfikowanej
4. Limit oznaczalności 0,1pg/ml dla
oznaczania polifenoli herbat można
uzyskać stosując połączenie techni-
ki HPLC z detektorem:
a. spektrofotometrycznym
b. fluorescencyjnym
c. spektrometrii masowej
d. elektrochemicznym
(RozwiÄ…zania szukaj w numerze)
Ryc. 8. Zawartość czterech podstawowych katechin i teaflawin w ślinie wolontariuszy na 2 minuty po
spożyciu 30ml roztworu zielonej i czarnej herbaty (1.6 mg/ml) [45].
Zasady publikowania artykułów naukowych w  Gazecie Farmaceutycznej
l Publikowane są artykuły z zakresu farmacji i medycyny
l Prace zgłaszane do druku winny zawierać: cel pracy, materiały i metody, wyniki, dyskusję, wnioski, wykaz piśmiennictwa
l Prace powinny być zaopatrzone w krótkie streszczenie i zbiór podstawowych słów kluczowych w języku polskim i angielskim
l Objętość pracy nie może przekraczać 20 tys. znaków, łącznie z tabelami, wykresami i piśmiennictwem
l Piśmiennictwo może zawierać co najwyżej 20 pozycji najistotniejszych dla publikowanej pracy, ułożonych wg kolejności cytowań z odpowiednio ponume-
rowanymi odsyłaczami, zgodnymi z zamieszczonymi w tekście
l Prace (tekst, tabele, rysunki, fotografie) powinny być przesłane w formie elektronicznej, opatrzone następującymi danymi: nazwisko i imię, stopień nauko-
wy i stanowisko, miejsce pracy, nr telefonu/faksu/e-mail, adres do korespondencji. Ponadto powinna być załączona zgoda autorów na opublikowanie pracy
w wersji elektronicznej  Gazety Farmaceutycznej
l Nadesłane prace recenzowane są anonimowo przez niezależnych ekspertów
l Redakcja zastrzega sobie prawo wprowadzania śródtytułów, niezbędnych poprawek stylistycznych i ew. zmniejszania objętości lub niepublikowania nade-
słanych materiałów.
GAZETA FARMACEUTYCZNA 5/2008
33


Wyszukiwarka