7368841139

7368841139



Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015

starterów czy nieodpowiedniego stężenia jonów Mg+, koniecznych do prawidłowego łączenia się DNA ze starterami.

Celem ćwiczenia jest porównanie długości genów dla dwóch drożdżowych białek rybosomowych: PI A i P1B (powielonych metodą PCR z genomowego DNA drożdży). Białka te cechuje jednakowa długość łańcucha polipeptydowego (106 aminokwasów) i duże podobieństwo struktury pierwszorzędowej, czego pochodną są zbliżone masy cząsteczkowe białek wynoszące odpowiednio 10 908 i 10 667 Da. Pozwala to założyć jednakową długość sekwencji nukleotydowej mRNA kodującego te białka. Startery reakcji PCR zostały zaprojektowane w ten sposób, aby powieleniu uległa sekwencja obejmująca początkowy kodon ATG jak też kodon STOP obu białek, dlatego uzyskane po reakcji PCR fragmenty DNA będą bezpośrednio odpowiadały długości genów kodujących te białka.

P1A    1    MSTESALSYA ALILADSEIE ISSEKLLTLT NAANVPVENI WADIFAKALD

P1B    1    MSDSIISFAA FILADAGLEI TSDNLLTITK AAGANYDNW ADYYAKALEG

P1A    51    GQNLKDLLVN FSAGAAAPAG YAGGYAGGEA GEAEAEKEEE EAKEESDDDM

P1B    51    KDLKEILSGF HNAGPYAGAG AASGAAAAGG DAAAEEEKEE EAAEESDDDM

P1A    101 GFGLFD

P1B    101    GFGLFD

Rys. Porównanie sekwencji aminokwasowych drożdżowych białek P1A i P1B

Materiały i odczynniki

1.    Genomowe DNA drożdży uzyskane w poprzednim ćwiczeniu.

2.    Startery reakcji PCR dla genów kodujących białka P1A i P1B

3.    Polimeraza Taq 0,5U/pl

4.    Bufor dla polimerazy Taq (firmowy)

5.    2 mM mieszanina deoksynukleotydów (dNTP)

6.    25 mM MgCh (firmowy)

7.    Jałowa dejonizowana woda

8.    Jałowe probówki Eppendorfa o poj. 0,5 ml, cienkościenne probówki do reakcji PCR o poj. 0,2 ml oraz końcówki do pipet

10



Wyszukiwarka

Podobne podstrony:
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, wrzesień 2014 starterów czy nieodpowiedniego stężenia jonów Mg+,
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015 UNIWERSYTET MARII CURIE-SKŁODOWSKIEJ WYDZIAŁ BIOLOGII I
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015 9. Odczynniki i zestaw do elektroforezy kwasów nukleino
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015 Materiały i odczynniki 1.    Całonocne
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015 powtarzalności między rozdziałami tej samej próbki
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015 6 % CHAPS 80 mM Tris base 100 mM DTT - dodać bezpośredn
Zakład Biologii Molekularnej UMCS. luty 2015 6.    Zawiesinę mieszać poprzez vortekso
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015 Fot.GE Healtcare 14. Usunąć folię zabezpieczającą pasek
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015 a następnie od drugiego końca naczynia aż cały pasek z
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015 Materiały i odczynniki 1.    12- godzinn
Zakład Biologii Molekularnej UMCS. luty 2015 4.    Uzyskane sferoplasty osadzić przez
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015 ELEKTROFORETYCZNY ROZDZIAŁ DNA W ŻELU AGAROZOWYM Agaroz
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015 Stosowane napięcie prądu podczas elektroforezy: Przy ni
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015 5.    Bromek etydyny 10 mg/ml 6.
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015Badanie wpływu antybiotyków na wzrost komórek bakterii E
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 201S i cykloheksimidu (CH), chloramfenikolu (C), streptomycy
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015Elektroforeza 2D jako narzędzie w diagnostyce chorób
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015Spis treści: 1.    Izolacja genomowego DN
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015Izolacja genomowego DNA z drożdży Saccharomyces

więcej podobnych podstron