7368841144

7368841144



Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015

Elektroforeza 2D jako narzędzie w diagnostyce chorób genetycznych

Elektroforeza dwukierunkowa (dwuwymiarowa) 2D (ang. two-dimentional) jest powszechnie stosowaną techniką rozdziału białek badanego proteomu. Metoda ta pozwala na wykrycie zmian w ekspresji białek, ich izoform czy modyfikacji potranslacyjnych (takich jak fosforylacja, glikozylacja czy ograniczona proteoliza). Składa się z dwóch etapów. Pierwszym etapem (kierunkiem, wymiarem) jest ogniskowanie izoelektryczne (IEF), w którym białka są rozdzielane w gradiencie pH w zależności od ich punktu izoelektrycznego (pi). W ogniskowaniu izoelektrycznym stosowane są komercyjne paski żeli z immobilizowanym gradientem pH gwarantującym wysoką rozdzielczość i powtarzalność uzyskanych wyników, bądź kapilary z żelem poliakrylamidowym z określonym gradientem pH. Drugim etapem (kierunkiem, wymiarem) jest elektroforeza w żelu poliakrylamidowym w warunkach denaturujących (SDS/PAGE) w której białka są rozdzielane zgodnie z ich masą cząsteczkową. W wyniku rozdziału białek metodą elektroforezy 2D, a następnie wybarwienia uzyskanego żelu (najczęściej stosowanymi barwnikami są - błękit Coomassie Brillant Blue oraz sole srebra) otrzymujemy „mapę białkową” składającą się z wielu plam, z których każda stanowi białko o określonych parametrach masy cząsteczkowej i punktu izoelektrycznego. Porównanie takich map pochodzących z komórek zdrowego i chorego organizmu może nam dostarczyć wiele informacji na temat białek charakterystycznych dla danej choroby, które potencjalnie mogą się stać nowymi markerami choroby. Dodatkowo, niektóre z tak wykrytych białek mogą stać się celem terapeutycznym. Mimo wielu zalet, metoda ta ma pewne ograniczenia. Dużą trudność sprawia uzyskanie profilu białkowego charakterystycznego dla całego proteomu, ponieważ białka występujące w komórce różnią się rozpuszczalnością. Na przykład, białka błonowe, hydrofobowe oraz o wysokiej masie cząsteczkowej mogą nie zostać wykryte przy zastosowaniu mocznika, który jest typowym składnikiem roztworów, w których przeprowadza się elektroforezę. Innym problemem jest wykrycie białek występujących w badanej próbce białkowej w bardzo niskich stężeniach. Jest to o tyle poważne ograniczenie, gdyż wiele białek regulatorowych, sygnałowych czy czynników transkrypcji, ważnych z punktu widzenia diagnostyki i prognostyki chorób, występuje w niskich stężeniach. Najprostszym sposobem na wyeliminowanie tych ograniczeń jest wstępne frakcjonowanie badanej próby. Kolejnym problemem jest uzyskanie odpowiedniej



Wyszukiwarka

Podobne podstrony:
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015 UNIWERSYTET MARII CURIE-SKŁODOWSKIEJ WYDZIAŁ BIOLOGII I
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015 starterów czy nieodpowiedniego stężenia jonów Mg+,
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015 9. Odczynniki i zestaw do elektroforezy kwasów nukleino
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015Badanie wpływu antybiotyków na wzrost komórek bakterii E
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015 Materiały i odczynniki 1.    Całonocne
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 201S i cykloheksimidu (CH), chloramfenikolu (C), streptomycy
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015 powtarzalności między rozdziałami tej samej próbki
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015 6 % CHAPS 80 mM Tris base 100 mM DTT - dodać bezpośredn
Zakład Biologii Molekularnej UMCS. luty 2015 6.    Zawiesinę mieszać poprzez vortekso
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015 Fot.GE Healtcare 14. Usunąć folię zabezpieczającą pasek
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015Spis treści: 1.    Izolacja genomowego DN
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015 a następnie od drugiego końca naczynia aż cały pasek z
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015Izolacja genomowego DNA z drożdży Saccharomyces
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015 Materiały i odczynniki 1.    12- godzinn
Zakład Biologii Molekularnej UMCS. luty 2015 4.    Uzyskane sferoplasty osadzić przez
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015 ELEKTROFORETYCZNY ROZDZIAŁ DNA W ŻELU AGAROZOWYM Agaroz
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015 Stosowane napięcie prądu podczas elektroforezy: Przy ni
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015 5.    Bromek etydyny 10 mg/ml 6.
Zakład Biologii Molekularnej UMCS, luty 2015Amplifikacja genów kodujących rybosomowe białka P1A i P1

więcej podobnych podstron